Dr. Johannes Söding
Analyse und Modellierung von regulatorischen Protein-DNS-Bindenergielandschaften
Department für Biologie - Genzentrum
Ludwig-Maximilians-Universität München
Feodor-Lynen-Str. 25
81377 München
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Forschungsgebiet
Die Transkriptionsrate eines Gens wird reguliert durch die koordinierte Bindung aktivierender oder reprimierender Transkriptionsfaktoren an seine Promotorsequenz und andere, weiter entfernt vom Gen liegende cis-regulative Elemente. Um die Transkriptionsrate in Abhängigkeit der Konzentrationen der regulierende Transkriptionsfaktoren berechnen und vorhersagen zu können, müssen wir die genauen Bindeenergien der Faktoren an sämtliche mögliche DNA-Bindesequenzen vorhersagen können. Nutiu und Mitarbeiter (Nature Biotechnology 2011) haben ein Hochdurchsatzverfahren entwickelt, das es erlaubt, die Bindeenergien eines Transkriptionsfaktors an zig Millionen verschiedene Bindesequenzen in einem modernen Hochdurchsatz-Sequenziergerät zu messen (“high-throughput sequencing - fluorescent ligand interaction profiling”, oder HiTS-FLIP). Mit Hilfe dieser neuen Methode könnte es möglich sein, die Bindeenergien aller menschlicher Transkriptionsfaktoren (etwa 2000) für sämtliche mögliche Bindesequenzen zu bestimmen.
Im Rahmen des BioSysNet-Netzwerkes werden wir theoretische Methoden und Software entwickeln, um diese Art von Messungen auszuwerten, zu interpretieren, und Modelle zu entwickeln, die die gemessenen Bindeenergielandschaften beschreiben können. Aufgrund der mangelnden experimentellen Daten konnten bisher nur sehr einfache Modelle verwendet werden, die auf stark vereinfachten Annahmen beruhen – wie etwa der Annahme, dass die verschiedenen Positionen in der Bindesequenz unabhängig voneinander additiv zur Gesamtbindeenergie beitragen. Diese Einschränkungen können mit dem HiTS-FLIP-Verfahren überwunden werden, was die Entwicklung neuartiger Modelle erfordert. Wir werden ausserdem in Zusammenarbeit mit Experimentatoren den Einfluss von Kooperativität zwischen interagierenden Transkriptionsfaktoren mit Hilfe der HiTS-FLIP-Technologie studieren. Diese Arbeiten werden dazu beitragen, die komplexen regulativen Netzwerke besser modellieren und analysieren zu können, die in der Entwicklung von Organismen und der Entstehung und Reaktion auf Krankheiten gleichermassen zentral sind.
Mitarbeiter
Vincent Wolowski
Publikationen im Rahmen von BioSysNet
Seemayer S, Gruber M, Söding J (2014). CCMpred-fast and precise prediction of protein residue-residue contacts from correlated mutations. Bioinformatics. [Epub ahead of print]
Runge S, Sparrer KM, Lässig C, Hembach K, Baum A, García-Sastre A, Söding J, Conzelmann KK, Hopfner KP (2014). In vivo ligands of MDA5 and RIG-I in measles virus-infected cells. PLoS Pathog 10(4):e1004081.
Meinel DM, Burkert-Kautzsch C, Kieser A, O'Duibhir E, Siebert M, Mayer A, Cramer P, Söding J, Holstege FC, Sträßer K (2013). Recruitment of TREX to the transcription machinery by its direct binding to the phospho-CTD of RNA polymerase II. PLoS Genet 9(11):e1003914.
Publikationen vor BioSysNet
Close P., East P., Dirac-Svejstrup A. B., Hartmann H., Heron M., Maslen S., Chariot A., Söding J., Skehel M., and Svejstrup J. Q. DBIRD integrates alternative mRNA splicing with RNA polymerase II transcript elongation. Nature, in press (2012) doi:10.1038/nature10925.
Remmert M., Biegert A., Hauser A., and Söding J. HHblits: Lightning-fast iterative protein sequence searching by HMM-HMM alignment. Nat Methods,9:173-175 (2011).
Seizl M., Hartmann H., Hoeg F., Kurth F., Martin D. E., Söding J., and Cramer P. A functional GA element in TATA-less RNA polymerase II promoters. PLoS ONE6: e27595 (2011).
Feller C., Prestel M., Hartmann H., Straub T., Söding J., and
Becker P.
The MOF-containing NSL complex associates globally with housekeeping genes, but activates only a defined subset. Nucleic Acids Res. 40:1509-1522
(2011).
Higgins D., Sievers F., Wilm A., Dineen D., Gibson T., Karplus K., Li W., Lopez R., McWilliam H., Remmert M., Söding J., Thompson J. Fast, scalable generation of high quality protein multiple sequence alignments using Clustal Omega. Mol Syst Biol. 7:539 (2011).
Söding J.and Remmert M. Protein sequence comparison and fold recognition: progress and good-practice benchmarking. Curr Opin Struct Biol21:404-411 (2011).
Lammens K., Bemeleit D. J., Möckel C., Clausing E., Schele A., Hartung S., Schiller C. B., Lucas M., Angermüller C., Söding J., Sträßer, and Hopfner K.-P. X-ray structure of a bacterial Mre11:Rad50 complex reveals an ATP dependent molecular clamp in DNA double-strand break repair. Cell145:54-66 (2011).
Frauer C., Rottach A., Meilinger D., Bultmann S., Fellinger K., Hasenoeder S., Söding J., Spada F., Leonhardt H. Different binding properties and function of CXXC zinc finger domains in Dnmt1 and Tet1. PLoS ONE6: e16627 (2011).
Armache J. P., Jarasch A., Anger A. M., Villa E., Becker T., Bhushan S., Jossinet F., Habeck M., Dindar G., Franckenberg S., Marquez V., Mielke T., Thomm M., Berninghausen O., Beatrix B., Söding J., Westhof E., Wilson D. N., Beckmann R. Localization of eukaryote-specific ribosomal proteins in a 5.5Å cryo-EM map of the 80S eukaryotic ribosome. Proc Natl Acad Sci USA. 107:19754-19759 (2010).
Armache J. P., Jarasch A., Anger A. M., Villa E., Becker T., Bhushan S., Jossinet F., Habeck M., Dindar G., Franckenberg S., Marquez V., Mielke T., Thomm M., Berninghausen O., Beatrix B., Söding J., Westhof E., Wilson D. N., Beckmann R. Cryo-EM structure and rRNA model of a translating eukaryotic 80S ribosome at 5.5-A resolution. Proc Natl Acad Sci USA. 107:19748-19753 (2010).
Graebsch A., Roche S., Kostrewa D., Söding J., and Niessing D. Of Bits and Bugs - on the Use of Bioinformatics and a Bacterial Crystal Structure to Solve a Eukaryotic Repeat-protein Structure. PLoS ONE5:e13402 (2010).
Mayer A*., Lidschreiber M*., Siebert M*., Leike K., Söding J., and
Cramer P.
Uniform transitions of the general RNA polymerase II transcription complex. Nat Struct Mol
Biol.17:1272-1278 (2010). (*) Shared first authors.
Böttger A., Lasi M., Pauly B., Schmidt N., Cikala M., Stiening B., Käsbauer T., Zenner G., Popp T., Wagner A., Knapp R., Grunert M., Söding J., David C., and Huber A. The molecular cell death machinery in the simple cnidarian hydra includes an extended caspase family, APAF-1 and pro- and antiapoptotic Bcl-2 proteins. Cell Res.20:812-825. (2010).
Remmert M., Biegert A., Linke D., Lupas A. N., and Söding J. Evolution of outer membrane beta-barrels from an ancestral beta beta hairpin. Mol Biol Evol. 27:1348-1358 (2010).
Alva V., Remmert M., Biegert A., Lupas A. N., and Söding J. A galaxy of folds. Protein Sci. 19:124-130 (2010)
Biegert A. and Söding J.(invited) A boost for sequence
searching.
G.I.T. Laboratory Journal 9-10:22-23 (2009). BIOforum Europe. 10:26-27
(2009).
Hildebrand A., Remmert M., Biegert A., and Söding J. Fast and accurate automatic structure prediction with Hhpred. Proteins.77 Suppl 9:128-132 (2009).
Remmert M., Linke D., Lupas A. N. and Söding J. HHomp - Prediction and classification of outer membrane proteins. Nucleic Acids Res.37:W446-451 (2009).
Biegert A. and Söding J. Sequence context-specific profiles for homology searching. Proc Natl Acad Sci USA106:3770-5 (2009).
Bateman A., Finn R. D., Sims P. J., Wiedmer T., Biegert A., and Söding J. Phospholipid scramblases and Tubby like proteins belong to a new superfamily of membrane tethered transcription factors. Bioinformatics25:159-162 (2009).